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琼脂糖凝胶电泳琼脂糖浓度

琼脂糖凝胶浓度与线性DNA分离范围参数:凝胶浓度(%) 线性DNA长度(bp) 0.5 1000~30000 0.7 800~12000 1.0 500~10000 1.2 400~7000 1.5 200~3000 2.0 50~2000 乐研生物,为您解答,希望能帮到你,望采纳!

琼脂糖凝胶浓度与线性dna分离范围参数:凝胶浓度(%) 线性dna长度(bp) 0.5 1000~30000 0.7 800~12000 1.0 500~10000 1.2 400~7000 1.5 200~3000 2.0 50~2000 乐研生物,为您解答,希望能帮到你,望采纳!

你确定你配制的胶是2%的吗?正确的配制方法是:小胶板的话,称0.26g的琼脂糖,取13mL的TBE缓冲液,熔胶,待稍冷却,加1uL左右的goldview,倒板,20min以后拔梳子.我们用的0.8%的都凝得很好,2%不可能不凝,你再看看你的胶配的方法对不对,看看是不是用的琼脂糖,如果都对,那就是琼脂糖不能用了给点分吧

琼脂糖凝胶电泳凝胶浓度对于琼脂糖凝胶电泳,浓度通常在0.5~2%之间,低浓度的用来进行大片段核酸的电泳,高浓度的用来进行小片段分析

总体原则是:分子量大的DNA,电泳时使用浓度较小的凝胶反之亦反.胶浓度越大,电泳速度越小;若胶浓度偏高,可能跑不动,条带缩在一起;若胶浓度过低,可能跑得太快,同样分不开.可参考下面的对应关系:凝胶浓度(%) 线性DNA长度(bp) 0.5 1000~30000 0.7 80

凝胶长度不影响电泳好坏.没有看到电泳图,根据你的描述猜测会不会是:1.电泳缓冲液正负极离子浓度差异过大.缓冲液用了多久了?换新的电泳缓冲液试一下.2.琼脂糖胶浓度不均匀.制胶的时候,琼脂糖有没有完全融化?倒胶时胶的流动性如何,是不是先插了梳子后倒的胶?胶凝固的时候,有没有一头对着吹冷风的窗户?等等

按照常规PCR方法进行各目的片bai段的独立扩增du.扩增使用PfuDNAPolymerase,各片段扩增的反应条件及扩增产物长度如表2所示zhi.扩增产物用dao0.8%的琼脂糖凝胶回电泳检测,确定目的条带,切胶GelExtraction MiniKit回收.凝胶制备过程中减少EB的加入量,要 求EB浓度一般低于答0.15 μg/ml.

我们用的两个浓度是10%和5%,这样应该不会漏胶了.判断是否凝固很简单,你只要别把胶全倒完,在配胶的烧杯里留一点,当烧杯里的凝固了,板里的就凝固了.

制备琼脂糖凝胶:按照被分离DNA分子的大小,决定凝胶中琼脂糖的百分含量;一般情况下,可参考下表:琼脂糖的含量(%) 分离线状DNA分子的有效范围(Kb)0.3 60-50.6 20-10.7 10-0.80.9 7-0.51.2 6-0.41.5 4-0.22.0 3-0.1琼脂糖凝胶的浓度一般从0.5%到~2都可以,1%最常用,这里单位是g/100mL.

琼脂糖各浓度对应的片段大小 一般都会选择1%琼脂糖凝胶,90-120V电压都没有问题,如果要分离片段的话,片段相差不大建议调低电压,增加琼脂糖凝胶浓度,跑胶时尽量让溴酚蓝跑的越低越好,只要不把想要的片段跑出去就好.本人尝试过2%琼脂糖凝胶,40V,跑了近三个小时啊,分开了相差约50bp的两个片段.目的产物大小80BP的片段,你可以用2.0%的琼脂糖凝胶进行电泳,琼脂糖以及TAE的量的多少,首先与你跑得样品的个数有关,因为你样品的个数决定了你胶槽的体积,胶槽的体积决定了你的TAE的量,决定了琼脂糖的量,比如说你胶槽的体积是20ml,那么你要配2.0%的胶,就需要20ml的TAE和0.4g的琼脂糖.

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